Deciphering the Foundations of Mitochondrial Mutational Spectra: Replication-Driven and Damage-Induced Signatures Across Chordate Classes

Molecular Biology and Evolution, 2025

Толық мәтін Ашық қол жеткізу: Gold Метадеректер (CSL-JSON)
DOI 10.1093/molbev/msae261
Деректер сенімділігі 85 жоғары
Бұл баға қалай есептеледі

Ол жазбаның өзінің тексерілетін белгілерінен құралады: мақаланың DOI-і бар ма, оның деректерін қанша тәуелсіз дереккөз растады, міндетті өрістер толтырылған ба және соңғы растау қаншалықты жаңа. Дереккөздер арасындағы алшақтық пен идентификатордың болмауы бағаны төмендетеді. 80-нен бастап мән жазбаның қосымша тексерусіз жарияланғанын, 60-тан 79-ға дейін — оның сенімділігі төмен күйде жарияланғанын және қолмен тексеру ұсынылатынын білдіреді. Редактор қолмен тексерген жазбаны қайта есептеу 90-нан төмен түсірмейді. Бұл — мақаланың өзіне емес, ол туралы деректерімізге берілген баға.

Аңдатпа

Mitochondrial DNA (mtDNA) mutagenesis remains poorly understood despite its crucial role in disease, aging, and evolutionary tracing. In this study, we reconstructed a comprehensive 192-component mtDNA mutational spectrum for chordates by analyzing 118,397 synonymous mutations in the CytB gene across 1,697 species and five classes. This analysis revealed three primary forces shaping mtDNA mutagenesis: (i) symmetrical, replication-driven errors by mitochondrial polymerase (POLG), resulting in C > T and A > G mutations that are highly conserved across classes; (ii) asymmetrical, damage-driven C > T mutations on the single-stranded heavy strand with clock-like dynamics; and (iii) asymmetrical A > G mutations on the heavy strand, with dynamics suggesting sensitivity to oxidative damage. The third component, sensitive to oxidative damage, positions mtDNA mutagenesis as a promising marker for metabolic and physiological processes across various classes, species, organisms, tissues, and cells. The deconvolution of the mutational spectra into mutational signatures uncovered deficiencies in both base excision repair (BER) and mismatch repair (MMR) pathways. Further analysis of mutation hotspots, abasic sites, and mutational asymmetries underscores the critical role of single-stranded DNA damage (components ii and iii), which, uncorrected due to BER and MMR deficiencies, contributes roughly as many mutations as POLG-induced errors (component i).