Peptidoglycan-Targeting Staphylolytic Enzyme Lysostaphin as a Novel and Efficient Protease toward Glycine-Rich Flexible Peptide Linkers

2023

Жабық қол жеткізу Метадеректер (CSL-JSON)
DOI 10.1021/acs.jafc.3c00189
Деректер сенімділігі 70 орташа
Бұл баға қалай есептеледі

Ол жазбаның өзінің тексерілетін белгілерінен құралады: мақаланың DOI-і бар ма, оның деректерін қанша тәуелсіз дереккөз растады, міндетті өрістер толтырылған ба және соңғы растау қаншалықты жаңа. Дереккөздер арасындағы алшақтық пен идентификатордың болмауы бағаны төмендетеді. 80-нен бастап мән жазбаның қосымша тексерусіз жарияланғанын, 60-тан 79-ға дейін — оның сенімділігі төмен күйде жарияланғанын және қолмен тексеру ұсынылатынын білдіреді. Редактор қолмен тексерген жазбаны қайта есептеу 90-нан төмен түсірмейді. Бұл — мақаланың өзіне емес, ол туралы деректерімізге берілген баға.

Аңдатпа

Glycine-rich flexible peptide linkers have been widely adopted in fusion protein engineering; however, they can hardly be cleaved for the separation of fusion partners unless specific protease recognition sites are introduced. Herein, we report the use of the peptidoglycan-targeting staphylolytic enzyme lysostaphin to directly digest the glycine-rich flexible linkers of various lengths including oligoglycine linkers and (G 4 S) x linkers, without the incorporation of extra amino acids. Using His-MBP-linker-LbCpf1 as a model substrate, we show that both types of linkers could be digested by lysostaphin, and the digestion efficiency improved with increasing linker length. The enzyme LbCpf1 retained full activity after tag removal. We further demonstrated that the proteolytic activity of lysostaphin could be well maintained under different environmental conditions and in the presence of a series of chemical reagents at various concentrations that are frequently used in protein purification and stabilization. In addition, such a digestion strategy could also be applied to remove the SUMO domain linked to LwCas13a via an octaglycine linker. This study extends the applications of lysostaphin beyond an antimicrobial reagent and demonstrates its potential as a novel, efficient, and robust protease for protein engineering.